GST親和層析介質（GST Agarose）是專門設計用于純化谷胱甘肽S-轉移酶（GST）融合蛋白、其它谷胱甘肽轉移酶以及與谷胱甘肽有親和作用蛋白的分離介質，一步分離就可得到高純度的GST融合目標蛋白，純化條件溫和，可以保證蛋白的活性。
本產品是**設計合成的GST瓊脂糖凝膠，具有優良的物理和化學穩定性，使用壽命長，操作方便，批次重復性好，易于放大，是研發與生產的理想選擇。 二、 性能參數
三、 適用范圍
分離谷胱甘肽S-轉移酶（GST）融合蛋白、其它谷胱甘肽轉移酶以及與谷胱甘肽有親和作用的蛋白。 四、 操作說明 1. 緩沖液配制
緩沖液A（平衡緩沖液）：10mM Na2HPO4，1.8mM KH2PO4，140mM NaCl，2.7mM KCl，調節pH值**8.0。 緩沖液B（洗脫緩沖液）：10mM Glutathione（還原型），50mM Tris-HCl，調節pH值**8.0。因Glutathione易氧 化，需現用現配。
（注：各種溶液配制完畢后，**好進行脫氣處理，0.45 μm濾膜過濾備用)。 2. 樣品預處理：按每克濕重菌體/2~5ml平衡緩沖液的比例充分懸浮離心收集的菌體；600w功率，每循環超聲3s，冷卻3s，循環99×3次,破碎菌體；4℃、15000rpm離心15m，收集上清液，或用0.45μm濾膜過濾。 3. 裝柱： 聚苯乙烯層析柱
1) 將層析柱固定在鐵架臺或層析架上，封閉層析柱下端出口，向柱內充入純水，排開層析柱內空氣，先將墊片完全浸沒于水面下方，在保持水平的狀態下，小心推向底部，避免墊片下方滯留氣泡。
2) 打開層析柱下端出口，排出柱中純水；在液面低**距墊片1~1.5cm高度時封閉下端出口，用移液槍按需要量吸取介質，或用玻璃棒緊靠柱子內壁引流，將介質加入到層析柱中；靜置30min，讓介質自然沉降。
3) 從上端管口將另一墊片緩慢推**介質沉降平面，使介質表面保持水平狀態，注意避免墊片與介質接觸面滯留氣泡（如對實驗結果要求不嚴，也可不放入上墊片，以提高流速）。
4) 在使用一段時間后，如果層析柱流速減慢，可先用小鑷子沿邊緣將墊片推翻，夾出墊片，倒出介質，清洗或更換新的墊片后，按2）、3）所述 玻璃層析柱
1) 將層析柱洗凈后垂直固定到鐵架臺上；向柱中加入蒸餾水，排開柱子中的空氣，在蒸餾水排盡以前，關閉柱子出口，在柱內保留5~8cm高度的蒸餾水。
2) 先將介質混勻，用移液槍按需要量吸取介質，或用玻璃棒緊靠柱子內壁引流，將介質加入到層析柱中；靜置30min，讓介質自然沉降。
3) 從上端管口將轉換桿出液端緩慢推**介質沉降平面，使介質表面保持水平狀態，注意避免轉換桿與介質接觸面間滯留氣泡。
4) 在使用一段時間后，如果流速減慢，可先卸下上轉換桿，將介質倒出，再取出下轉換接頭中濾網，清洗或更換后重新裝柱。 4. 過柱：
1) 用10倍介質體積緩沖液A過柱，平衡介質；
2) 上樣；
3) 用5~10倍介質體積緩沖液A過柱，洗去層析柱中剩余上樣液并重新平衡介質； 4) 用5~10倍介質體積緩沖液B洗脫，收集洗脫液； 5) 用5~10倍介質體積緩沖液A重新平衡介質。
注：純化過程流速不宜過快，對于1ml介質，流速保持在0.5ml/min為宜。 5. 介質清洗
如果在使用一段時間后，介質因表面沉積過多雜質導致蛋白結合能力下降，需對介質進行清洗。步驟如下： 1) 沉淀或變性物質的清洗：
用2倍介質體積6 M鹽酸胍清洗，然后用5倍介質體積緩沖液A平衡介質。 2) 疏水締合物質的清洗：
用3~4倍介質體積70%乙醇 (或2倍介質體積去垢劑，如 1% Triton™ X-100) 清洗介質；然后用5倍介質體積緩沖液A平衡介質。 6. 介質再生
每次層析前，為達到**佳純化效果，需對介質進行再生，步驟如下：
1) 2倍介質體積高pH緩沖液（0.1M Tris-HCl, 0.5M NaCl, pH8.5）和低pH緩沖液（0.1M sodium acetate, 0.5M NaCl, pH4.5）交替洗脫三次。
2) 10倍介質體積緩沖液A平衡介質。 7. SDS-PAGE檢測：
1) 不同濃度SDS-PAGE分離膠分離范圍
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A. 每個膠孔**適蛋白上樣量為5~10μg。
B. 將含5~10μg蛋白的樣品溶液與loading buffer混勻，90℃孵育5min，取出后5000rpm離心1 min。 C. 上樣，15mA、30mA恒流或80V、120V恒壓電泳。 8.介質保存
4℃~8℃條件下，介質可長期保存于20%乙醇中。 五、 GST Agarose分離GST融合蛋白實例
層析介質：GST 1ml；對照GST介質（*際**品牌）1ml
樣品：表達可溶性GST-tag融合thioredoxin的大腸桿菌BL21裂解液 #p#分頁標題#e#
結合緩沖液：10mM Na2HPO4，1.8mM KH2PO4，140mM NaCl，2.7mM KCl，pH 8.0 洗脫緩沖液：10 mM Glutathione（還原型）, 50 mM Tris-HCl, pH8.0 流速：GST 1ml，0.5ml/min；對照GST介質1ml，0.5ml/min 實驗結果：
色譜分析結果見圖1，色譜各組分的SDS-PAGE結果見圖2。 圖1 GST Agarose分離GST融合蛋白色譜圖
1.低分子量Marker；2.上樣液； 3.GST-流穿液；4.GST-洗脫液； 5.對照-流穿液；6.對照-洗脫液
1 2 3 4 5 6 圖2 純化后SDS-PAGE圖
六、GST親和層析介質使用注意事項
1. GST融合蛋白與還原型谷胱甘肽的結合比較緩慢，為獲得**大結合量，需要保證足夠的作用時間，因而在上樣時要維持較低流速。在樣品中加入5~10mM DTT可以增加介質對目標蛋白的吸附。對于按常規步驟操作吸附效果不好的樣品，可以先把介質和樣品混合，輕輕振搖2~4h，再裝柱，用平衡緩沖液進行重新平衡、洗脫等操作。
2. 不同的GST融合蛋白取得**佳純化效果所需還原型谷胱甘肽濃度、洗脫體積和洗脫時間可能有所不同。必要時需對流穿液、洗脫液進行SDS-PAGE以及Western雜交分析，以確定**佳純化條件。
3.GST融合蛋白以包涵體形式存在時不能與介質結合，必須先進行變性、復性、透析處理后才能用介質進行純化。純化效果取決于復性效率。 4.純化后出現雜帶的常見原因 1) 目標蛋白斷裂或酶解
解決方案：向緩沖液A和緩沖液B中加入1mM PMSF抑制蛋白酶活性，或0.1％TritonX-100或0.1％Tween-20等穩定劑。
2) GST融合蛋白不完全表達
GST融合蛋白有時候只表達到GST部分就終止，GST標簽蛋白連同完全表達的融合蛋白均能與介質結合并被洗脫下來，因而洗脫液中出現26KD左右的雜帶。
解決方案：嘗試用不同濃度的還原型谷胱甘肽洗脫；優化表達條件，降低GST融合蛋白不完全表達量；改變外源基因在載體中插入的酶切位點，重新構建表達載體；在不改變外源基因兩端酶切位點的情況下，更換通用載體。 5. 如后續實驗需要除去洗脫液中還原型谷胱甘肽，可采用超濾或透析的方法。 七、GST標簽切除
GST標簽可用位點專一的蛋白酶如凝血酶或Xa因子從融合蛋白中切除。蛋白酶解后，再用GST親和層析方法去除GST標簽，目標蛋白存在于流出液中。一般情況下，與切除GST標簽后得到的外源蛋白相比，凝血酶用量極小，如果后續實驗要求不嚴格，不需進一步除去與外源蛋白共存與洗脫液中的凝血酶。如需除去凝血酶，則可將樣品用pH7~8的緩沖液溶解，然后直接過1ml的苯甲脒瓊脂糖凝膠或者肝素瓊脂糖凝膠吸附凝血酶。
